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https://doi.org/10.47460/uct.v29i126.925
Caracterización morfológica y optimización de
bio-insumo a base de microorganismos eficientes
Jorge Abel Crespo Ávila
https://orcid.org/0000-0002-7127-2818
jcrespoa@uteq.edu.ec
Universidad Técnica Estatal de Quevedo
Quevedo, Ecuador
Recibido (27/11/2024), Aceptado (17/01/2025)
Morphological characterization and optimization of bio-input based on efficient
microorganisms
Abstract.- The study of morphological characterization and optimization of bio-inputs based on efficient
microorganisms is essential for agriculture and biotechnology. In this research, indigenous microorganisms
were isolated and characterized, evaluating their growth in alternative culture media. Three media
supplemented with alternative energy sources according to bacterial nutritional requirements at different
concentrations were prepared. For the analysis, a Completely Randomized Design (CRD) with 25 treatments
was used. In Medium 1, all strains showed uncountable bacterial counts due to excessive growth. The colonial
growth results provide valuable information on the nutritional preferences and adaptive responses of bacteria
to different culture conditions, providing key data for developing more efficient and sustainable bio-inputs.
Keywords: bio-input, microorganisms, culture media.
Resumen: El estudio de la caracterización morfológica y la optimización de bioinsumos basados en
microorganismos eficientes es esencial para la agricultura y la biotecnología. En esta investigación se aislaron y
caracterizaron microorganismos autóctonos, evaluando su crecimiento en medios de cultivo alternativos. Se
prepararon tres medios suplementados con fuentes alternativas de energía según los requerimientos
nutricionales bacterianos en distintas concentraciones. Para el análisis, se utilizó un Diseño Completamente al
Azar (DCA) con 25 tratamientos. En el Medio 1, todas las cepas mostraron conteos bacterianos incontables
debido a un crecimiento excesivo. Los resultados de crecimiento colonial proporcionan información valiosa
sobre las preferencias nutricionales y las respuestas adaptativas de bacterias ante diferentes condiciones de
cultivo proporcionando datos clave para el desarrollo de bioinsumos más eficientes y sostenibles.
Palabras clave: bio-insumo, microorganismos, medios de cultivo.
Tipo de artículo: artículo de investigación
*Autor de correspondencia: jcrespoa@uteq.edu.ec
Cecibel Carolina Carranza Cárdenas
https://orcid.org/0009-0003-8289-975X
cecibel.carranza2016@uteq.edu.ec
Universidad Técnica Estatal de Quevedo
Quevedo-Ecuador
Manuel Benjamín Suquilanda Valdivieso
https://orcid.org/0009-0004-5764-7435
msuquilandav@uteq.edu.ec
Universidad Técnica Estatal de Quevedo
Quevedo, Ecuador
Ketty Vanessa Arellano Ibarra
https://orcid.org/0000-0001-7168-7485
ketty.arellano2017@uteq.edu.ec
Universidad Técnica Estatal de Quevedo
Quevedo, Ecuador
Luis Fernando Vera Benites
https://orcid.org/0000-0003-4567-1919
luisverabenites.ec@gmail.com
Universidad Técnica Estatal de Quevedo
Quevedo, Ecuador
I. INTRODUCCIÓN
Uno de los principales desafíos de la agricultura es reducir el impacto ambiental de los agroquímicos
sintéticos sin comprometer la productividad. Actualmente, el 50 % de los nutrientes para el crecimiento
vegetal proviene de fertilizantes químicos; sin embargo, su uso excesivo disminuye la biodiversidad, contamina
el ambiente, genera desbalances de nutrientes y materia orgánica, y ocasiona pérdidas económicas a los
agricultores. [1].
La caracterización morfológica y la optimización de bioinsumos a base de microorganismos eficientes son
áreas de creciente interés en la agricultura sostenible, que incluyen una amplia diversidad de
microorganismos que consisten en productos formulados líquidos que contienen más de 80 especies de
microorganismos, capaces de coexistir como comunidades microbianas potenciando la disponibilidad de
nutrientes esenciales para las plantas [2]. La caracterización morfológica de los microorganismos eficientes
permite identificar sus estructuras celulares, adaptaciones fisiológicas y posibles interacciones con el medio
ambiente, proporcionando información crucial para su aplicación efectiva. Asimismo, la optimización de
bioinsumos implica la evaluación de condiciones específicas de cultivo y formulación que maximizan su
viabilidad y funcionalidad en distintos sistemas agrícolas.
El uso de bioinsumos formulados en base a microorganismos que favorezcan el crecimiento vegetal, puede
lograrse mediante la aplicación de combinaciones de microorganismos seleccionados que aportan diferentes
beneficios al suelo y las plantas [3], pues la biofertilización con microorganismos presentes en enmiendas
orgánicas u otros bioinsumos actúan como probióticos para ellas [4]. Esto se debe a su capacidad para
mejorar la estructura física del suelo, incrementar la actividad fotosintética contribuyendo a una agricultura
sostenible [5]. Este estudio tuvo como finalidad analizar las características morfológicas de microorganismos
eficientes y desarrollar estrategias para la optimización de bioinsumos, contribuyendo al fortalecimiento de
prácticas agrícolas sostenibles y al mejoramiento de la salud del ecosistema.
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II. DESARROLLO
Los microorganismos eficientes (EM) constituyen una alternativa sostenible y ecológica para mejorar la salud,
la fertilidad del suelo y productividad de los cultivos. Estos microorganismos, como bacterias ácido lácticas,
bacterias fotosintéticas, levaduras y hongos, se encuentran en ecosistemas naturales y tienen propiedades
funcionales que benefician finalmente a la producción de cultivos y por ende a los agricultores [2]. En la
producción de inóculos bacterianos a gran escala con fines comerciales se deben considerar materias primas
que garanticen la supervivencia de los microorganismos, desde la producción hasta la aplicación, siendo
económico, estéril, no reactivo, fácilmente disponible y compatible con el medio ambiente.
Existen especies de Pseudomonas que al colonizar las raíces y tejidos pueden mitigar los impactos del estrés
ambiental en la planta al contribuir a la obtención de nutrientes, regular los niveles de hormonas, inducir la
acumulación de antioxidantes y permitir, regular o disminuir la expresión de los genes relacionados con el
crecimiento. Algunos de los efectos comprenden: incremento en la asimilación de nutrientes, estimulación del
sistema radicular, activación de respuestas de defensa, disminución del estrés abiótico. Las rizobacterias son
capaces de mejorar la tasa fotosintética de las plantas debido al aumento en conductancia estomática y una
mayor eficiencia fotoquímica particularmente bajo condiciones de estrés abiótico, mejorando la asimilación
del CO₂, aumentan el contenido de clorofila [6].
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A. Bioprospección de microorganismos
La bioprospección de microorganismos autóctonos conlleva la investigación de microorganismos capaces de
potenciar la fertilidad del suelo y la asimilación de nutrientes por las plantas, reduciendo así la necesidad de
emplear fertilizantes químicos. Estos microorganismos pueden ser capaces de fijar nitrógeno en el suelo,
mejorar la disponibilidad de nutrientes o controlar enfermedades de las plantas de manera natural, al
desarrollar consorcios microbianos o biofertilizantes a partir de microorganismos nativos, se busca promover
prácticas agrícolas más sostenibles y respetuosas con el medio ambiente. Estos biofertilizantes pueden ser
utilizados como una alternativa amigable con el ecosistema y reducir la dependencia de los fertilizantes
químicos [7].
Los microorganismos normalmente se reproducen en medios nutritivos donde encuentran los nutrientes
necesarios para su desarrollo que les proporcionan condiciones óptimas para su crecimiento en entornos
controlados de laboratorio o de la industria [8]. El diseño de un medio de cultivo responde a las exigencias del
microorganismo en cuestión y a la finalidad que se persigue con su multiplicación; por tanto, la selección y la
concentración adecuada de los nutrientes es un factor de vital importancia. Un medio de cultivo optimizado
garantiza el suministro adecuado de nutrientes esenciales para el crecimiento y desarrollo de los
microorganismos empleados en la producción de bio-insumos. Este proceso implica la formulación y
optimización de los medios de cultivo, que incluyen el diseño, la composición y la concentración de nutrientes,
así como la consideración de factores como el pH, la temperatura y la agitación [9].
La relevancia de reemplazar los medios sintéticos por alternativas de bajo costo radica en que estos últimos
suelen representar entre el 50 % y el 70 % de los costos de producción [10]. El uso de medios de cultivo
alternativos para la producción de bio-insumos agrícolas es un tema relevante en la búsqueda de soluciones
sostenibles y amigables con el medio ambiente en la industria agrícola. Los bio-insumos son productos que se
emplean en el manejo integrado de plagas o en la mejora de la producción y productividad de los cultivos y los
suelos, elaborándose a partir de microorganismos vivos, virus, macroorganismos, productos de ocurrencia
natural o productos bioquímicos.
B. Diseño y formulación de medios de cultivo
La selección de medios, formulación adecuada, método y medio de propagación del inóculo (medio y sistema
de cultivo), puede ser una limitante en el proceso de producción de un biofertilizante, además del alto costo
de las materias primas industriales. Igualmente, se deben optimizar los parámetros de fermentación de los
inóculos bacterianos para garantizar un adecuado crecimiento de las bacterias. El diseño y la optimización de
medios de cultivo son fundamentales para promover el crecimiento de microorganismos en la producción de
bio-insumos. Este proceso implica seleccionar nutrientes según las necesidades específicas del
microorganismo, considerando sus rutas metabólicas y procesos de regulación. La composición del medio no
solo influye en el rendimiento y la productividad, sino también en la facilidad y el costo de separar el producto
final.
La formulación de los medios de cultivo implica calcular con precisión las concentraciones de nutrientes y
regular factores clave como el pH, la temperatura y la agitación. Los medios no sintéticos, además de ser una
opción económica y respetuosa con el medio ambiente, deben satisfacer las necesidades esenciales de los
microorganismos para garantizar la producción de biomasa y metabolitos. No obstante, es fundamental
analizar la procedencia de los insumos, ya que podrían contener sustancias tóxicas que comprometan el
desarrollo microbiano. Un medio de cultivo diseñado y optimizado de manera adecuada resulta indispensable
para lograr una producción eficiente y sostenible de bio-insumos [8].
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III. METODOLOGÍA
El estudio se desarrolló en condiciones controladas dentro del laboratorio de Biología y Microbiología de la
Universidad Técnica Estatal de Quevedo (UTEQ), ubicado en la Finca Experimental “La María”, garantizando la
reproducibilidad de los experimentos mediante la estandarización de las variables y de los procedimientos
empleados. Para la recolección y análisis de los datos, se aplicaron protocolos estandarizados en biología y
microbiología y se empleó un Diseño Completamente al Azar (DCA) garantizando la validez y confiabilidad de
los resultados obtenidos.
La preparación de los sustratos y la captura de los microorganismos, fundamental para el desarrollo del
experimento, se realizó con precisión, utilizando contenedores plásticos con capacidad para 500 gramos, que
contenían arroz cocido, harina de pescado y melaza como potenciadores del crecimiento microbiano. El
sustrato preparado se colocó en los recipientes, que fueron sellados con malla o nylon y asegurados con una
liga para evitar derrames. Para la obtención de la solución madre de microorganismos eficientes (EM) en
medio líquido, se añadieron 9 litros de agua hervida pero fresca a la cosecha de arroz impregnado con
microorganismos, se agregaron 3 litros de melaza, agitando luego la mezcla durante 5 minutos. El recipiente
se selló herméticamente y se dejó reposar por 30 días para facilitar el proceso de propagación de los
microorganismos.
El proceso de aislamiento y purificación de los microorganismos capturados fue fundamental para asegurar
la obtención de cepas representativas. Para ello, se emplearon técnicas estándar de dilución seriada la cual se
procedió a tomar una muestra de la solución madre obtenida, con la que se llevaron a cabo diluciones
seriadas hasta 10⁻⁶ UFC en tubos Eppendorf con 900 µL de agua destilada y 100 µL homogenizados con
vortex. Posteriormente, se prepararon medios de cultivo PDA (Papa- Dextrosa- Agar) y Agar Nutriente, que
fueron esterilizados y vertidos en cajas Petri. En estas, se sembraron 20 µL de las diluciones y se incubaron a
28 °C durante 48 horas. Para la purificación de cepas, se seleccionaron las colonias más representativas y se
utilizó la técnica de siembra por estriado por agotamiento en los mismos medios. Esto incluyó dividir las cajas
Petri en cuatro cuadrantes y estriar las muestras de manera progresiva, incubando las placas a 37 °C por 24-
48 horas para obtener cepas puras y reactivadas.
B. Pruebas bioquímicas de las cepas aisladas
Las pruebas bioquímicas de las cepas aisladas incluyeron la tinción de Gram, la prueba de catalasa, la prueba
de oxidasa, la prueba de auxinas y la prueba de fluorescencia. En la tinción de Gram, se diferenciaron las
bacterias Gram-positivas y Gram-negativas según su pared celular, utilizando cristal violeta, yodo, etanol y
safranina o rojo de metilo, resultando en bacterias Gram-positivas de color violeta oscuro y Gram-negativas de
rosa o rojo. La prueba de catalasa se realizó aplicando peróxido de hidrógeno sobre una colonia, observando
burbujas para indicar la presencia de la enzima. La prueba de oxidasa implicó el uso de tetrametil-p-
fenilendiamina, con un cambio a azul-púrpura indicando actividad oxidasa-positiva. En la prueba de auxinas,
se inoculó King B y se utilizó el reactivo de Salkowski para detectar auxinas, observando un cambio de color a
rojo intenso. Finalmente, en la prueba de fluorescencia, se observó el crecimiento bacteriano en medio King B
bajo luz ultravioleta para evaluar la emisión de fluorescencia. Para evaluar el crecimiento bacteriano bajo
diferentes formulaciones de medios de cultivo suplementados con fuentes alternativas de energía, se
prepararon diversas composiciones de medios en distintas concentraciones, ajustadas a los requerimientos
nutricionales de las bacterias. Se elaboraron tres medios de cultivo, cuyas características y composiciones se
detallan en la tabla 1.
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IV. RESULTADOS
A. Morfología bacteriana
El análisis de la morfología colonial indicó que el 62,5 % de los aislamientos presentaron una forma circular
tras 72 horas de incubación, mientras que el 37,5 % restante exhibió una morfología puntiforme. En relación
con la elevación de las colonias, se observó una predominancia del 87,5 % con elevación regular, excepto en el
caso de la cepa CB7, que representó el 12,5 % de la población analizada y mostró una elevación puntiforme.
Respecto a la caracterización del borde, el 87,5 % de las colonias mostró un borde entero, siendo la cepa CB3
la única que presentó un borde ondulado (tabla 2).
Tabla 1. Formulación de los medios de cultivos alternativos.
C. Carga bacteriana de los medios de cultivos medios alternativos
Se incubó en un matraz Erlenmeyer con 100 mL de medios de cultivo a 26 °C durante 48 horas con agitación
continua a 150 rpm. Para el recuento de microorganismos viables, se utilizó la técnica de conteo de Unidades
Formadoras de Colonia (UFC/mL) mediante microgotas, preparando diluciones seriadas hasta un factor de -4.
En placas de Petri con medio King B, se depositaron 20 μL de cada dilución en cuadrantes definidos,
dispersando las microgotas en un diámetro de 1.5-2 cm. Tras 24 horas de incubación, se contaron las
diluciones que formaron entre 30 y 300 colonias. Para determinar el número de células viables por mililitro
(mL) se utilizó la ecuación UFC = (Nc * Fd) / Vs (1), donde UFC representa las unidades formadoras de colonia,
Nc el número de colonias por caja, Fd el factor de dilución y Vs el volumen de siembra.
Tabla 2. Morfología bacteriana.
Nota: CR (Circular); PT (Puntiforme); GN (Granular); CV (Convexa); EV (Elevada); PN (Plana); ET (Entera);
OD (Ondulada); DD (Dentada); + (Presencia de morfología); - (Ausencia de morfología).
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B. Pruebas bioquímicas
Los estudios bioquímicos realizados en las cepas en estudio indicaron que el 100% de ellas son productoras
de complejos auxínicos. Se destacó que las cepas CB1, CB6 y CB7 exhibieron los niveles más altos de
producción, como se detalla en la (Tabla 3). Además, la mayoría de las cepas exhibieron actividad de oxidasa y
catalasa, con la excepción de la cepa CB7, que no demostró actividad enzimática catalasa. Asimismo, se
observó que todas estas cepas son bacterias Gram negativas y presentan fluorescencia, una característica
típica del género Pseudomonas.
Los estudios bioquímicos realizados en las cepas en estudio indicaron que el 100 % de ellas son productoras
de complejos auxínicos. Mazzoni et al. [11] mencionan que los complejos auxínicos son compuestos químicos
que pertenecen a una clase de hormonas vegetales conocidas como auxinas. Bajo dicho contexto Calatrava et
al. [12] determinaron que la producción de complejos auxínicos de las cepas microbianas ocurre debido a la
presencia de enzimas específicas en su metabolismo.
El análisis de la producción enzimática de catalasa mostró resultados significativos, evidenciando que las
bacterias evaluadas alcanzaron niveles óptimos de síntesis de la enzima. En particular, las cepas CB5, CB6, CB7
y CB8 (figura 1) destacaron los niveles más altos de producción. La elevada actividad enzimática observada en
estas cepas sugiere una mayor eficiencia en la descomposición de peróxidos, así como una notable capacidad
para resistir condiciones oxidativas adversas.
Tabla 3. Pruebas bioquímicas.
Fig. 1. Prueba de catalasa.
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El análisis enzimático realizado para evaluar la actividad de las oxidasas en la cepa CB7 no mostró evidencia
de actividad enzimática detectable. Este resultado sugiere la ausencia de enzimas oxidasas en dicha cepa, lo
cual podría estar asociado con su perfil metabólico característico. En contraste, las demás cepas analizadas
bajo las mismas condiciones exhibieron una reacción notablemente positiva, evidenciando una actividad
enzimática significativa de las oxidasas (fig. 2). Estos hallazgos indican una alta presencia de estas enzimas en
las cepas mencionadas, lo que podría repercutir en su capacidad metabólica y en su adaptación a entornos o
sustratos específicos.
Las cepas analizadas presentaron una composición de pared celular típica de bacterias Gram negativas, lo
que permitió establecer una relación entre ellas basada en características bioquímicas y patrones de
crecimiento. Dichas cepas se agrupan dentro de clados relacionados que comparten esta característica
distintiva, como las bacterias del género Pseudomonas, reconocidas por su capacidad para asociarse con el
sistema radicular de las plantas (fig. 3).
Fig. 2. Prueba de oxidasa.
Fig. 3. Tinción de Gram.
El estudio bioquímico de las cepas de microorganismos eficientes EM obtenidas demostró que el 100 % son
bacterias Gram negativas y presentan fluorescencia, una característica típica del género Pseudomonas. Molina
et al. [13] mencionan que este género es conocido por su diversidad metabólica y su capacidad para colonizar
una amplia gama de ambientes, desde suelos hasta ambientes acuáticos y la rizosfera de las plantas. Además,
Shaikh et al. [14] evidencian que muchas especies de Pseudomonas son conocidas por su versatilidad en la
degradación de compuestos orgánicos y su potencial en aplicaciones industriales.
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Los aislados bacterianos exhibieron una distintiva fluorescencia verde al ser expuestos a luz ultravioleta
(figura 4), tras un periodo de incubación de 72 horas en el medio de cultivo Pseudomonas Agar F. Entre las
cepas analizadas, CB2, CB4 y CB5 destacaron por la intensidad de su fluorescencia y su rápido crecimiento en
dicho medio. Las cepas CB1, CB3, CB6 y CB8 también mostraron crecimiento y fluorescencia, aunque en
menor intensidad en comparación con CB2, CB4 y CB5. A pesar de la atenuación en la fluorescencia, el
desarrollo observado en el medio Pseudomonas Agar F sugiere una adaptación compartida a las condiciones
del entorno. Este comportamiento podría reflejar características metabólicas y genéticas comunes entre las
cepas evaluadas.
Fig. 4. Prueba de fluorescencia.
C. Análisis del crecimiento bacteriano sometido a diferentes formulaciones de medios de cultivo
suplementado con fuentes alternativas de energía.
En el estudio presentado en la tabla 4, se evaluó el crecimiento bacteriano de distintas cepas (CB) utilizando
tres medios de cultivo alternativos. En el medio 1, todas las cepas mostraron conteos bacterianos incontables,
lo que indica un crecimiento excesivo que no pudo ser cuantificado de manera precisa.
En el medio 2, se observaron diferencias significativas en el crecimiento bacteriano entre las cepas. Los
resultados fueron los siguientes: CB1 alcanzó un crecimiento de 22,33 unidades; CB2, 30,67 unidades; CB3,
30,33 unidades; CB4 registró el mayor crecimiento con 104,67 unidades; CB5 alcanzó 61,00 unidades; CB6,
60,50 unidades; CB7, 60,68 unidades; y CB8 presentó el menor crecimiento con 14,33 unidades. Mientras que,
en el medio 3, también se evidenció variabilidad en el crecimiento bacteriano. CB1 presentó un crecimiento de
46,00 unidades; CB2, 53,33 unidades; CB3 alcanzó 123,33 unidades; CB4 mostró un crecimiento de 49,33
unidades; CB5 registró 121,00 unidades; CB6 presentó el menor crecimiento con 7,00 unidades; CB7 alcanzó
62,46 unidades; y CB8 mostró el crecimiento más bajo, con 1,50 unidades.
Los valores compartidos con letras indican agrupaciones estadísticamente similares, donde la letra "a"
representa los valores más altos y "d" los más bajos. Esta categorización permite identificar patrones
significativos en la respuesta de las cepas a los diferentes medios de cultivo. Sin embargo, Pattnaik et al. [15]
mencionan que, además de carbono, las bacterias necesitan otros nutrientes esenciales, como nitrógeno,
fósforo, potasio y otros minerales, para sintetizar proteínas, ácidos nucleicos y otras biomoléculas. En otra
investigación hacen referencia a que las sales minerales presentes en el medio proporcionan estos nutrientes
esenciales, ayudando así al crecimiento y desarrollo bacteriano.
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CONCLUSIONES
Los hallazgos de este estudio evidencian una marcada predominancia de grupos bacterianos con
concentraciones microbianas significativas. En particular, se identificaron cepas productoras de complejos
auxínicos y bacterias Gram negativas con propiedades fluorescentes, características distintivas del género
Pseudomonas. Estos resultados sugieren la implicación de dichas bacterias en procesos biológicos relevantes,
destacando su potencial aplicación en la promoción del crecimiento vegetal y en estrategias biotecnológicas
orientadas a la sostenibilidad agrícola.
Los análisis del crecimiento colonial evidenciaron una notable diversidad en las preferencias nutricionales y
en las respuestas adaptativas de las cepas bacterianas frente a distintos medios de cultivo alternativos.
Proporcionan información relevante sobre su capacidad metabólica y ecológica, destacando su potencial para
ser utilizadas en aplicaciones biotecnológicas y en la optimización de estrategias de cultivo microbiológico.
Además, la caracterización bioquímica y genética de estas cepas permitió identificar la producción de
metabolitos secundarios con actividad promotora del crecimiento vegetal. Entre ellos, se destacan sideróforos,
compuestos antifúngicos y enzimas degradadoras de moléculas complejas, lo que resalta su papel en la
mejora de la disponibilidad de nutrientes y en la protección de las plantas contra patógenos. Estos hallazgos
refuerzan la importancia de estas bacterias en el microbiota del suelo, no solo como facilitadores del
crecimiento vegetal, sino también como agentes clave en el equilibrio ecológico de los ecosistemas agrícolas.
Por otro lado, la evaluación de la resistencia y tolerancia de las cepas a diversas condiciones de estrés
ambiental, como variaciones en el pH, disponibilidad de nutrientes y exposición a compuestos
antimicrobianos, evidenció su notable plasticidad fenotípica. Esta capacidad adaptativa sugiere un alto
potencial para su aplicación en biotecnología agrícola, en particular en el desarrollo de bioinoculantes y
biofertilizantes que puedan mejorar la productividad de cultivos en suelos con características desafiantes.
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LOS AUTORES
Jorge Abel Crespo Ávila Profesional agrícola con maestría en Agroecología y
Desarrollo Sostenible, Con una sólida formación técnica y un enfoque en la
producción orgánica, se dedica a la importación y distribución de insumos
diseñados para el manejo responsable de cultivos. Su experiencia combina
conocimientos en agroecología con estrategias de sostenibilidad.
Crespo J. Caracterización morfológica y optimización de bio-insumo a base de microorganismos eficientes
Cecibel Carolina Carranza Cárdenas es una profesional ecuatoriana con una
maestría en agroecología y desarrollo sostenible. Con una sólida formación en el
sector agrícola, se ha comprometido con la mejora de la productividad de manera
sostenible. Su carrera se caracteriza por su impulso a la innovación en el sector
agrícola. Trabaja en una asociación de pequeños productores de cacao.
ISSN-E: 2542-3401, ISSN-P: 1316-4821
Universidad, Ciencia y Tecnología,
Vol. 29, Núm. 126, (pp. 89-99)
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Manuel B. Suquilanda Valdivieso, Ingeniero Agrónomo, Magister Scientiae.
Investigador, agrarista y académico Es uno de los precursores de la Agroecología en
el Ecuador, siendo autor de 47 libros, sobre el tema. Por su labor a favor del
ambiente y la búsqueda de alternativas tecnológicas al uso de agroquímicos en la
agricultura, ha recibido el reconocimiento nacional e internacional.
Ketty Vanessa Arellano Ibarra, Estudiante de un Masterado en Agronomía con
mención en Producción Agrícola Sostenible. Es una profesional con experiencia en
el sector agrícola y de investigación. Consultora del CIAT en Ecuador para el
proyecto Clima-Loca, que impulsa innovaciones de producción baja en cadmio y
resilientes al clima en la cadena de cacao en Colombia, Ecuador y Perú.
Luis Fernando Vera Benites Ingeniero Agrónomo, profesional independiente,
relacionado al campo de la agronomía durante 4 años. He colaborado en trabajos
de investigación y proyectos nacionales en la rama de la microbiologia, fisiologia y
edafologia. Actualmente, presto servicios profesionales a la Estacion Experimental
Tropical Pichilingue del INIAP (Ecuador).
Crespo J. Caracterización morfológica y optimización de bio-insumo a base de microorganismos eficientes
